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凝膠成像系統(tǒng)中蛋白質(zhì)電泳凝膠如何拍攝?蛋白質(zhì)凝膠電泳操作說明

發(fā)布時間: 2021-09-23 10:17:58 來源:凝膠成像 作者:凝膠成像廠家 閱讀:
凝膠成像系統(tǒng)中Western blot是一項在復(fù)雜樣本中檢測蛋白質(zhì)表達水平的技術(shù),至今已有超過40年的歷史,并成為了蛋白質(zhì)研究中最常用的工具之一。在凝膠成像系統(tǒng)中中蛋白質(zhì)電泳凝膠如何拍攝?
  在科學技術(shù)迅速發(fā)展的今天,凝膠電泳作為非常重要的科研實驗方法早已被廣泛應(yīng)用于蛋白和核酸的分離。而電泳圖像的采集、保存和相關(guān)處理分析主要依靠凝膠成像系統(tǒng)。凝膠成像系統(tǒng)中Western blot是一項在復(fù)雜樣本中檢測蛋白質(zhì)表達水平的技術(shù),至今已有超過40年的歷史,并成為了蛋白質(zhì)研究中最常用的工具之一。在凝膠成像系統(tǒng)中中蛋白質(zhì)電泳凝膠如何拍攝?
蛋白質(zhì)凝膠電泳操作說明
  蛋白質(zhì)凝膠電泳操作說明:
  1、把上述處理的樣品按1:1(V/V)與2×SDS凝膠加樣緩沖液混合,100℃加熱3分鐘,使蛋白質(zhì)變性;
  2、取出變性蛋白質(zhì),立即放于冰上。樣品如粘稠可進行超聲對DNA進行剪切,以最大功率處理0.5~2分鐘應(yīng)能有效地將裂解液粘稠度降至可控水平(注意:此步驟一定要在冰上進行);
  3、如有沉淀以10 000g將樣本4℃離心10分鐘,將上清液移至另一管中,棄去沉淀物;
  4、計算使用Western印跡法檢測靶蛋白所需要的樣本量,一般Western印跡法技術(shù)檢測中等大小蛋白的檢出下限約為1~5ng。在厚0.75mm的SDS聚丙烯酰胺凝膠上,每個泳道可加樣100μg而不致過多;
  5、 用玻璃微量進樣器按順序加樣,注意沿加樣孔底上樣,否則樣品容易漂走。加樣量不宜過多或過少,一般15~20ul為宜。沒上樣的加樣孔中加1?SDS凝膠加樣緩沖液;
  6、用注射器排除兩玻璃板底部的氣泡,將電泳裝置接通電源(正極接下槽,負極接上槽),凝膠上所加電壓為8v/cm,當溴酚藍前沿進入分離膠后,電壓可提高到15V/cm,繼續(xù)電泳直至溴酚藍到達分離膠底部(約4小時),關(guān)閉電源;
  7、從電泳裝置上卸下玻璃板,放入一瓷盤中,用一注射器吸取若干毫升電泳緩沖液,將針頭插入一玻璃板與凝膠之間,小心不要將凝膠刺破,沿玻璃板從左至右注入電泳緩沖液,將玻璃板與凝膠分開??拷筮吳腥ヒ唤且詷嗣髂z的位置;
  8、如不需做免疫檢測可直接用考馬斯亮藍染色。
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